تعیین سطوح پلوئیدی ژنوتیپ‌های لایم منسوب به پرشین‌لایم (Citrus latifolia Tanaka) در ایران

نویسندگان

1 دانش‌آموخته دکتری، گروه باغبانی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه هرمزگان، و محقق بخش تحقیقات علوم زراعی و باغی، مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی هرمزگان، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندرعباس، ایران.

2 استادیار، گروه باغبانی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران.

3 دانشیار، پژوهشکده مرکبات و میوه‌های نیمه‌گرمسیری، مؤسسه تحقیقات علوم باغبانی، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، رامسر، ایران.

4 استادیار، پژوهشکده مرکبات و میوه‌های نیمه‌گرمسیری، مؤسسه تحقیقات علوم باغبانی، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، رامسر، ایران.

5 دانشیار، گروه باغبانی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد جهرم، جهرم، ایران.

چکیده

شیوع بیماری جاروک لیموترش در مناطق عمده پرورش لایم در ایران، تولیدکنندگان را به سمت کاشت گونه لایم تریپلویید مقاوم به این بیماری یعنی پرشین‌لایم ترغیب کرده است تا تولید لایم در جنوب ایران تداوم داشته باشد. در این رابطه، تعداد قابل ملاحظه‌ای از ژنوتیپ‌های ناشناخته لایم توسط باغداران به‌عنوان پرشین‌لایم کشت می‌شود که هیچ اطلاعات ثبت شده‌ای از منشاء، مورفولوژی و زمینه ژنتیکی آن‌ها وجود ندارد. جهت مشخص‌کردن وضعیت رده‌بندی گیاهی ژنوتیپ‌های لایم مشابه با پرشین‌لایم، 18 ژنوتیپ جمع‌آوری شده از استان‌های فارس، هرمزگان و مازندران، با استفاده از روش فلوسایتومتری و ویژگی‌های مورفولوژی در سال 1395 در مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی استان هرمزگان، بندرعباس، مورد بررسی قرار گرفتند. نتایج فلوسایتومتری نشان داد که 14 ژنوتیپ از 18 ژنوتیپ لایم مورد بررسی، تریپلویید و بقیه دیپلویید بودند. میزان شاخص DNA برای چهار ژنوتیپ دیپلوئید از 896/0 تا 000/1 و در ژنوتیپ‌های تریپلویید از 313/1 تا 563/1 متغیر بود. ژنوتیپ‌های تریپلویید ابعاد برگ بزرگ‌تر و تراکم روزنه و کیسه‌های ترشحی کمتری نسبت به ژنوتیپ‌های دیپلویید داشتند. نتایج نشان داد که ژنوتیپ‌های خارکُل، لیموی‌خیاری و لیموی‌موسوم به مصری (که به اشتباه به‌جای پرشین‌لایم در برخی مناطق جنوبی ایران کشت می‌شود) دیپلوئید می‌باشند و ممکن است به بیماری جاروک لیموترش حساس باشند.

تازه های تحقیق

Outbreak of witches broom disease of lime (WBDL) in major lime growing regions of Iran has necessitated research for tolerant lime species, Persian lime (Citrus latifolia Tanaka), to sustain lime production in southern part of Iran. In this context, a considerable number of unknoun lime genotypes have been cultivated by farmers and are known as Persian lime with no documented evidence of their origin, morphological characteristics and genetic background. To determine systematic relationship of lime genotypes known as Persian lime, we studied 18 lime genotypes collected from Fars, Hormozgan and Mazandaran provinces in Iran using flow cytometry technique and morphological characteristics in 2016 in Hormozegan Agricultural and Natural Resources Research and Education Center, Bandar Abbas, Iran. The results of flow cytometry revealed that 14 out of 18 lime genotypes were triploid and the remaing were diploid. DNA indexes for four diploid genotypes ranged from 0.896-1.000 and for triploid genotype varied from 1.313-1.563. Triploid genotypes had greater leaf dimensions and lower stomata and secretory sacs density. Results of this study showed that Kharkol, Cucumber-shaped and Egyption lime (which are known as Persian lime in south of Iran) genotypes, are diploid and can be susceptibile to witches broom disease of lime (WBDL) phytoplasma.

کلیدواژه‌ها

عنوان مقاله [English]

Determination of Ploidy Level of Lime Genotypes Known as Persian Lime (Citrus latifolia Tanaka) in Iran

نویسندگان [English]

  • H. Hassanzadeh Khankahdani 1
  • S. Rastegar 2
  • B. Golein 3
  • M. Golmohammadi 4
  • A. Aboutalebi Jahromi 5
1 1. Ph.D. graduate, Horticulture Group, Faculty of Agriculture and Natural Resources, Hormozegan University, and Researcher, Field and Horticultural Crops Research Department, Hormozegan Agricultural and Natural Research and Education Center, Agricultural Research, Education and Extension Organization, Bandar Abbas, Iran.
2 Assistant Professor, Horticulture Group, Faculty of Agriculture and Natural Resources, Hormozegan University, Bandar Abbas, Iran.
3 Assosiate Professor, Citrus and Sub-Tropical Fruits Research Center, Horticultural Science Research Institute, Agricultural Research, Education and Extension Organization, Ramsar, Iran.
4 Assitant Professor, Citrus and Sub-Tropical Fruits Research Center, Horticultural Science Research Institute, Agricultural Research, Education and Extension Organization, Ramsar, Iran.
5 Assosiate Professor, Horticulture Group, Jahrom Branch, Islamic Azad University, Jahrom, Iran.

کلیدواژه‌ها [English]

  • Persian lime
  • DNA index
  • secretory sacs
  • Tahitian lime
  • triploid

مراجع

Afshar-Mohammadian, M., Omidi, Z., Purakbari-kasmaei, R., and Asadi-Abkenar, A. 2013. The effect of polyploidy on some anatomical and antioxidant characteristics of Citrus aurantifolia. Journal of Plant Researches (Iranian Journal of Biology) 26(3): 238-246 (in Persian).
 
 
Aleza, P., Juarez, J., Cuenca, J., Ollitrault P., and Navarro, L. 2010. Recovery of citrus triploid hybrids by embryo rescue and flow cytometry from 2X × 2X sexual hybridization and its application to extensive breeding programs. Plant Cell Report 29: 1023-1034.
 
 
Anonymous. 2003. Narcis dictionary. Computer Software. www.narcissoft.com. Bakhshi, B., Aghaei M. J., Bihamta M. R., Darvish, F., and Zarifi, E. 2010. Ploidy determination of Aegilops cylindrica host accessions of Iran by using flow cytometry and chromosome counting. Iranian Journal of Botany 16(2): 258-266.
 
 
Cantuarias-Avilés, T., Filhoa, F. A. A. M., Stuchi, E. S., Da-Silva, S. R., Espinosa-Nuneza, E., and Neota, H. B. 2012. Rootstocks for high fruit yield and quality of ‘Tahiti’ lime under rainfed conditions. Scientia Horticulturae 142: 105-111.
 
 
Cottin, R. 2002. Citrus of the world: a citrus directory. Version 2.0. France: SRA INRACIRAD. 62 pp.
 
 
Curk, F., Ollitrault, F., Garcia-Lor, A., Luro, F., Navarro, L., and Ollitrault, P. 2016. Phylogenetic origin of limes and lemons revealed by cytoplasmic and nuclear markers. Annals of Botany: 1-19.
 
 
Germana, M. A., Germana, M. P., Motisi, A., and Sottile, F. 2002. Research on stomata frequency and size in several citrus species. Pp. 100-102. In: Proceedings of 7th International Citrus Congress, International Society of Citriculture.
 
 
Ghanavati, F., and Eskandari, H. 2011. Relationship between the chloroplast number in stomatal guard cells, flow cytometry and ploidy level in Onobrychis spp. Seed and Plant Improvement Journal 27(3): 427-439 (in Persian).
 
 
Golein, B., Rabiei, V., Mirabbasi, F., Fifaei, R., and Hallaji-Sani, M. F. 2015. Effect of salinity stress on physiology and biochemistry characteristics of citrus genotypes. Journal of Horticultural Science 29(3): 416-425 (in Persian).
 
 
Gu, X. F., Yang, A. F., Meng, H., and Zhang, J. R. 2005. In vitro induction of tetraploid plants from diploid Zizyphus jujube Mill. cv. Zhanhua. Plant Cell Report 24: 671-676.
 
 
Hodgson, R. W. 1967. Horticultural varieties of Pp. 431-592. In: Reuther, W., Webber, H. J. and Batchelor, L. D (eds.). The citrus industry, Volume I. University of California Press.
 
 
Hosseini, H. R., Chehrazi, M., Nabati-Ahmadi, D., and Mahmoodi-Soorestani, M. 2014. Induction of auto-tetraploidy in Madagascar periwinkle (Catharanthus roseus cv. Rosea) by colchicine treatment in order to induce diversity of morph-physiological and phenology traits. Journal of Plant Process and Function 3(9): 1-10 (in Persian).
 
 
Jaskani, M. J., Khan, M. M., and Khan, I. A. 2002. Growth, morphology and fruit comparison of diploid and tetraploid Kinnow mandarin. Pakistan Journal of Agriculture Sciences 39: 126-128.
 
 
Kainth, D., and Grosser, J. W. 2010. Induction of auto-tetraploids in pummelo (Citrus grandis L. Osbeck) through colchicine treatment of meristematically active seeds In vitro. Proceedings of the Florida State Horticultural Society 123: 44-48.
 
 
Kwon, S. J., Roy, S. K., Cho, K. Y., Moon, Y. J., Woo, S. H., and Kim, H. H. 2015. Effect of Colchicine on the induction of Prunella vulgaris for. albiflora Nakai. Korean Journal of Crop Science 60(1): 107-113.
 
 
Lavania, U. C. 2005. Genomic and ploidy manipulation for enhanced production of phyto-pharmaceuticals. Plant Genetic Research 3: 170-177.
 
 
Longley, A. E. 1925. Polycarpy, polyspory and polyploidy in citrus and citrus relatives. The Washington Academy of Science 15: 347-357.
 
 
Malekzadeh-Shafaroodi, S., Ghani, A., Habibi, M., and Amiri, A. 2011. Evaluation the possibility of polyploidy induction in sweet basil (Ocimum basilicum L.) by colchicine treatment. Journal of Horticultural Science 25(4): 461-469 (in Persian).
 
 
Padoan, D., Mossad, A., Chiancone, B., Germana, M. A., and Valli Khan, P. S. S. 2013. Ploidy levels in Citrus clementine affect leaf morphology, stomatal density and water content. Theoretical and Experimental Plant Physiology 25(4): 283-290.
 
 
Salehi, M., Nejat, N., Tavakoli, A. R., and Izadpanah, K. 2005. Reaction of citrus cultivars to Candidatus Phytoplasma aurantifolia in Iran. Journal of Plant Diseases 41: 363-376 (in Persian).
 
 
Seker, M., Tuzcu, O., and Ollitrault, P. 2003. Comparison of nuclear DNA content of citrus rootstock populations by flow cytometry analysis. Plant Breeding 122: 169-172.
 
 
Shahriari-Ahmadi, F., Dehghan, E., Farsi, M., and Azizi, M. 2008. Tetraploid induction of Hyoscyamus muticus L. using colchicine treatment. Pakistan Journal of Biological Sciences 11: 2653-2659..
 
 
Singh, A., Nagvi, S. A. M. H., and Singh, S. 2002. Citrus germplasm, cultivars and rootstocks. Kalyani Publishers, New Delhi. 166 pp.
 
 
USDA. 2002. Citrus variety collection: Egyptian lime. University of California Riverside, CRC 2883, PI 185427. https://citrusvariety.mcr.edu./Citrus/egyption.html.
 
 
Yahata, M., Harosaki, S., Komatsu, H., Takami, K., Kunitake, H., Yabuya, T., Yamashita, K., and Toolapong, P. 2005. Morphological characterization and molecular verification of a fertile haploid pummel (Citrus grandis Osbeck). American Society for Horticultural Science 130(1): 34-40.
 
 
Ye, Y. M., Tong, J., Shi, X. P., Yuan, W., and Li, G. R. 2010. Morphological and cytological studies of diploid and Colchicine-induced tetraploid lines of crape myrtle (Lagerstroemia indica L.). Scientia Horticulturae 124: 95-101.
 
 
Yuan, S. X., Liu, Y. M., Fang, Z. Y., Yang, L. M., Zhuang, M., Zhang, Y. Y., and Sun, P. T. 2009. Study on the relationship between the ploidy level of microspore-derived plants and the number of chloroplasts in stomatal guard cells in Brassica oleracea. Agricultural Sciences in China 8: 939-946.
 
 
Zhu, S. P., Song, J. K., Hu, Z. Y., Tan, B., Xie, Z. Z., Yi, H. L., and Deng, X. X. 2009. Ploidy variation and genetic composition of open-pollinated triploid citrus progenies. Botany Studies 50: 319-324.
 
 
Ziveak, M., Brestic, M., Kalaji, H. M., and Govindjee, Kh. 2014. Photosynthetic responses of sun- and shade-grown barley leaves to high light: is the lower PSII connectivity in shade leaves associated with protection against excess of light? Photosynthetic Research 119: 339-354.
 
 
 
نهال و بذر
دوره 34، شماره 3
مهر 1397
صفحه 323-340

فایل ها

هم رسانی

ارجاع به این مقاله

آمار